1. 预期用途
本试剂盒用于检测人血清、血浆、组织等样本中西尼罗病毒IgM 抗体浓度，仅供研究使用。
2. 检测原理
试剂盒采用捕获法原理：将抗人IgM-μ链抗体包被于酶标板上，加入样品，样品中的IgM抗体被捕获，结合形成“抗μ-IgM抗体”免疫复合物，清洗去除游离的杂质，再加入HRP标记的酶标抗原，形成“抗μ-IgM抗体-酶标抗原”夹心复合物，清洗去除多余的酶标抗原，加入TMB显色，再加入终止液，用酶标仪在450 nm处测OD值，颜色的深浅和样品中的待测抗体的浓度呈正比。
3. 包含的实验材料实验材料
| 名 称 Label | 组成成分 Kit Components | 数量（48T） Quantity | 数量（96T） Quantity |
| 酶标板 | 预包被捕获抗体的酶标板 | 8×6条 | 8×12条 |
| 校准品（10×） | 待测物（800 ng/mL） | 1支×100μL | 1支×200μL |
| 酶标记物（100×） | 100倍浓缩HRP酶标记抗原 | 1支×50μL | 1支×100μL |
| 通用稀释液（20×） | 样品/校准品/酶标抗体通用稀释液 | 1支×10mL | 1支×15mL |
| 浓缩洗液（20×） | 20倍浓缩洗液 | 1支×15mL | 1支×25mL |
| 显色剂 | TMB、过氧化氢 | 1支×6mL | 1支×10mL |
| 终止液 | 稀硫酸 | 1支×3mL | 1支×6mL |
如需单独采购通用型组分，请提供对应的组分名称。
4. 需要但未包含的实验材料
· 蒸馏水或去离子水，一次性离心管、一次性手套等耗材；
· 移液器、多通道移液器及配套枪头；
· 烧杯、量筒、试剂瓶等容器具；
· 用于封贴微孔板的封板膜或其他替代材料；
· 微孔板振荡器（如有需要）、离心机、旋涡振荡器等辅助设备；
· 恒温培养箱、恒温水浴箱、酶标仪、洗板机。
5. 试剂的准备及储存
· 1×洗液的配制：浓缩洗液（20×）如有晶体析出，需在37℃下加热至晶体全部溶解后使用。用蒸馏水1:20稀释，例如：10mL浓缩洗涤液加入190mL的蒸馏水，混合均匀。
1×通用稀释液的配制：用蒸馏水1:20稀释，例如：10mL的20×浓缩通用稀释液加入190mL的蒸馏水，混合均匀。
1×酶标抗体工作液的配制：100×酶标抗体用“1×通用稀释液”按1:100倍稀释，例如：10uL的（100×）酶标抗体加入990uL的“1×通用稀释液”，混合均匀。配制好的1×酶标抗体工作液可以在2~8℃保存8h。
· 工作校准品的配制：校准品开封前应离心30秒，确保所有校准品集中于底部；
准备7个离心管，将10×校准品按需吸取一定量用“1×通用稀释液”稀释10倍配制成校准品S1。例：50uL的10×校准品+450uL的“1×通用稀释液”，制备得到500μL的S1浓度校准品。在随后的6个离心管中分别加入250μL的“1×通用稀释液”，在这6个试管中（S2~S7）将S1校准品依次倍比稀释6个梯度至S7，共配制7个浓度的校准品，依次为：S1、S2、S3、S4、S5、S6、S7，如下图所示。“1×通用稀释液”作为空白校准品S0。
6. 样品采集、预处理及储存
· 血清：使用血清采集管采集全血，室温静置待血细胞凝集后取的血清，或直接在1000×g下离心15分钟取得血清。操作应柔和，避免溶血发生�；袢〉难逵笆苯屑觳�，如不能及时进行检测，应等分为多份，储存在-20℃及以下温度条件，储存时间不超过6个月，样品冻融不超过2次。
· 血浆：使用EDTA或肝素采血管收集血浆。全血采集后以1000×g离心15分钟取得血浆。操作应柔和，避免溶血发生。获取的血浆应及时进行检测，如不能及时进行检测，应等分为多份，储存在-20℃及以下温度条件，储存时间不超过6个月，样品冻融不超过2次。
· 组织：组织称重后剪碎，将剪碎的组织加入裂解液，一般按1:4-1:9的重量体积比，比如100mg的组织样品对应400uL的裂解液，具体可根据实验需要适当调整，最后将匀浆液于5000×g离心5-10分钟，取上清检测。
· 细胞：取适量细胞，于冰上进行超声破碎，5000×g离心5-10分钟，取上清检测。
· 细胞上清：取细胞上清于5000×g离心5-10分钟，取上清检测。
7. 实验步骤
使用前将所有试剂置于室温平衡30分钟左右，也可置于37℃温箱快速回温至室温。
注意：酶标板未恢复室温前，请勿开封。
| 1 | 编号 | 检测试验需设置校准品孔、样品孔、空白孔，合理规划各样本的排布。 |
| 2 | 稀释 加样 | 校准品孔：每孔加入校准品100uL，（S1-S7，共7个浓度）。 样品孔：1×通用稀释液80uL，再加入血清样本20uL。 测细胞：每孔加入细胞上清/细胞裂解液100uL。 空白孔：每孔加入1×通用稀释液100uL。 |
| 3 | 温育 | 盖上封板膜，在37℃下孵育60分钟 |
| 4 | 洗板 | 洗板3次，最后一次洗板后倒扣酶标板，在干净的吸水纸上拍去残液。 |
| 5 | 加酶 | 校准品孔/样品孔：每孔加入100μL酶标抗体工作液。 空白孔：不加酶工作液。 |
| 6 | 温育 | 盖上封板膜，在37℃下孵育60分钟。 |
| 7 | 洗板 | 洗板5次，最后一次洗板后倒扣酶标板，在干净的吸水纸上拍去残液。 |
| 8 | 显色 | 每孔加入显色剂100uL，37℃避光显色15分钟。 |
| 9 | 终止 | 每孔加终止液 50uL。 |
| 10 | 测定 | 使用酶标仪在450nm检测波长及620~690nm参比波长条件下测定吸光度值，如果没有参比波长则仅选择450nm波长进行检测。如果最高浓度校准品OD值过高，应立即在405/630nm双波长条件下检测。 |
* 应当进行预实验确定最佳稀释倍数。
8. 结果计算
双波长检测结果无需进行调0，可直接进行标曲拟合及结果计算。
以下曲线拟合方式均可使用，选择拟合后r值最佳的拟合方式进行结果计算。
l 四参数逻辑（4-P）曲线拟合：以浓度值为横坐标，吸光度值为纵坐标；
l 多项式曲线拟合：2次多项式、3次多项式；
l 双对数直线拟合：以浓度值取对数，吸光度值取对数后，进行直线拟合；
l 点对点拟合：各相邻点之间分别单独进行线性拟合，分段计算；
推荐使用专业化软件进行结果拟合和计算，如ELISACALC、SPSS、Graphpad Prism等。
**最终样本浓度应乘上样本的稀释倍数。
曲线拟合方式示例图，以下数据和曲线仅供示例，与本试剂盒测定结果无关。
9. 检测的局限性
样本浓度超出检测范围上限时，应当进行适当加大稀释倍数后再次检测，计算结果应当乘上稀释倍数。样本浓度低于LOQ定量限时，检测结果无法进行准确定量。
10. 产品性能指标
以下结果基于校准品的浓度值实验得出，未纳入基质效应等其他因素的潜在影响。
灵敏度：0.83 ng/mL
精密度：板内精密度CV＜10%（N=20），板间精密度CV＜15%（N=20）。
特异性（Analytical specificity）：其他相关因子在稀释缓冲液中制备为10μg/mL测定，没有观察到明显的交叉反应。
11. 注意事项
· 试剂盒内所有成分仅供研究使用！
· 终止液含稀硫酸，具有腐蚀性，应谨慎操作。
· 试剂盒成分含防腐剂、蛋白成分等，可能引起皮肤过敏反应，应佩带口罩避免吸入薄雾。
· 显色剂、浓缩洗液可能引起皮肤、眼睛和呼吸道刺激，应佩带口罩避免吸入薄雾。
· 佩戴防护手套、防护服、眼睛和面部防护用品，实验操作后彻底洗手。
12. 技术要点
· 不同批次的试剂盒不能混用，不建议将不同板上的微孔板条组装在一块板上检测，尽管是同一批次试剂，也可能存在板与板之间的差异。
· 每次实验时应当始终配制标准曲线平行检测，不能将上一次的标准曲线用于下一次实验结果的计算。
· 不要使用超过有效期的试剂盒进行检测。
· 底物显色剂应当为无色，如变蓝表明已变质，不能应用于实验。
· 使用适当的封板膜密封微孔板条，以便检测结果更加可靠。
· 操作时尽量避免产生气泡。不要将不同试剂瓶的瓶盖交叉使用。
· 应当遵循说明书的操作进行实验，不按照说明书的操作将导致实验结果的变化，任何不遵循说明书的实验操作应当事先询问售后技术支持的建议。否则我们不保证实验结果的可靠。
